鹅血液基因组DNA的简单快速提取方法研究
吴慧英1,刘铀2,贾汝敏1*,刘艳芬1,张丽1
(1.广东海洋大学动物科学系,广东湛江524088;2.广东海洋大学动物医学系,
广东湛江524088)
摘要:本研究针对家禽血液红细胞有细胞核的特点,研究适合鹅血液基因组DNA的廉价、简便、快速
的DNA提取方法,并为其它禽(鸟)类相关操作提供参考。通过裂解细胞,利用简便快速的操作方法将蛋白质和核酸分离,去除杂质,沉淀核酸,获得大量基因组DNA,并通过基因扩增检测其质量和效果。该方法提
NA电泳检测条带明量,无拖尾,含量及纯度均较高,能够用于分子生物学实验研究。与传统的取的基因组D
酚-氯仿DNA抽提方法相比,本实验建立的血液基因组DNA提取方法具有成本低、操作步骤简便和快速的特点,特别是对大量样品的提取更为实用。
关键词:DNA提取方法;鹅血液中图分类号:S814.8文献标识码:A文章编号:1005-8567(2010)04-0029-03
SimpleandrapidextractionmethodofgoosebloodgenomeDNAWuHuiYing1,LiuYou2,JiaRumin1*,LiuYanfen1,ZhangLi1
(1.DepartmentofAnimalScience,GuangdongOceanUniversity,Zhanjiang524088,China;2.DepartmentofVeterinary
Medicine,GuangdongOceanUniversity,Zhanjiang524088,China)
Abstract:SimpleandrapidDNAextractionmethodwasestablishedaccordingtothefeaturethattheavianredbloodcellshavenucleolus,whichwouldprovidereferencesforotherfowls(birds).Bloodcellswerelysedandthenthenucleicacidwasseparatedfromproteins.ThenthegenomeDNAwasacquiredafterprecipitation.ThequalityofobtainedDNAwasdetectedbyPCRandelectrophoresis.TheobtainedgenomeDNAwascompleteandhighlypure.Thusitcouldbeusedasthetempleteforfurtheranalysis.TheresultsshowedthatthisDNAextractionmethodwassimple,fastandwithlowcost.Itwasespeciallyadapttotheextractionoflarge-scalesamples.
Keywords:DNAextractionmethod;gooseblood
获得高纯度和完整的基因组DNA是进行后续分子生物学研究的基础,而寻找合适的DNA提取方法是基因工程和分子生物学实验面临的首要问题。不同物种、不同材料其DNA提取方法各异[1]。动物多采用活体采血继而从血液中提取DNA,这样可以在不杀死动物的前提下对其基因组DNA进行研究。从哺乳动物血液中提取基因组DNA的方法大都是先得到淋巴细胞,再用蛋白酶K等消化。由于家禽及鸟类血液红细胞中有细胞核,DNA含量丰富,因此应建立适合家禽血液生理的DNA提取方法。目前,以鸡为材料的家禽基因组DNA的提取方法较为常见,如CTAB法、SDS法、异硫氰酸
收稿日期:2010-03-30
热硼酸盐法以及商业DNA提取试剂盒等,但鲜胍、
见鹅血DNA提取方面的报道;且有些方法较为繁琐和昂贵。
我国是世界上养鹅数量最多且品种资源最为丰富的国家。狮头鹅、合浦鹅作为我国优良的地方家禽品种资源,以其品质优良著称于世,丰富了世界家禽遗传资源基因库,尤其是狮头鹅作为我国乃至亚洲唯一的大型鹅种,具有体型大、适应性强、产肉性能好、生长速度快、耐粗饲等优良特性,是极为宝贵的家禽资源[2],但两鹅种都存在就巢性强及产蛋率低等缺点,亟待从分子水平对其生物学特性进行研究。
*:通讯作者
基金项目:湛江市科技招标项目(0609135)、广东海洋大学基金项目(C04095)和校企合作项目(0810314)
·30·试验研究鹅血液基因组DNA的简单快速提取方法研究—吴慧英,等
上游引物:PRL1-CCTGAACAGGTTTGTTGCTGG下游引物:PRL2-CATGGATCTGCTGAGCTTGCT
10×PCRPCR反应体系:20μL(DNA模板5μL,
Buffer2μL,20pmol/L正反引物各1μL,2.5mmol/LdNTP2μL,Taq酶1μL,ddH2O8μL)。反应条件:94℃预变性5min,30个循环(94℃变性50s,55℃退火40s,72℃延伸60s),72℃再延伸10min。扩增完毕后用1%琼脂糖电泳检测。
1.6ISSR多态性分析检测以提取的DNA为模板进行ISSR标记多态性分析,PCR产物通过变性聚丙烯酰胺凝胶进行电泳,以检测所获得的DNA效果。
但现有DNA提取方法对鹅血液基因组DNA的提取不能取得较好效果。因此,笔者在借鉴和改进前人工作的基础上[3-9],研究建立一种适合鹅血液DNA提取的快速、简便、经济实用方法,以利于从分子水平上对鹅种生物特性进行研究,同时也为其它禽类分子遗传学的相关研究提供参考。
1材料和方法
0.1MTris-HCl1.1试剂及样品DNA提取液:
(pH8.0),0.5MNaCl,0.05MEDTA-Na2,2%SDS,0.1%β-巯基乙醇,0.5%PVP(聚乙烯吡咯烷酮);抗凝剂ACD[15];氯仿-异戊醇(24:1);琼脂糖(Sigma公司);DNAMarker、TaqDNA聚合酶、dNTP均购自TaKaRa公司;其它试剂均为国产分析纯。血液样品采集:狮头鹅、合浦鹅各60只,无菌翅静脉采血0.5mL/只,加入抗凝剂ACD,冻存于-20℃备用。
)取20μL抗凝全血放1.2DNA提取方法(1
入1.5mL离心管中,加入500μLDNA提取液,充分混匀,65℃温水浴30min,期间振荡数次。(2)以12000r/m离心10min,小心取出上清转移至新的1.5mL离心管,在上清中加入1/10体积的3MNaAc(pH5.2),4℃静置20min,再加入300μL氯仿-异戊醇(24:1),剧烈振荡,4℃静置20min,12000r/m离心10min。(3)转移上清至新的1.5mL离心管,加入等体积的异丙醇(-20℃预冷),轻轻颠倒混匀,室温放置30min;12000r/m离心5min,弃去上清。(4)用75%酒精洗涤沉淀两次,将离心管倒置于吸水纸上5-10min,待风干后加入200μLTE溶解沉淀,-20℃低温保存备用。
1.3基因组DNA的纯度、浓度测定利用紫外分光光度计测定DNA溶液在260nm和280nm处吸光度值,根据OD260nm与OD280nm比值来估计DNA的纯度[15],用A260/A280比值表示。根据公式计算DNA浓度:DNA的含量(mg/mL)=50×A260×稀释倍数/1000
1.4琼脂糖电泳检测采用1%琼脂糖凝胶电泳检测DNA的质量,观察电泳条带大小及是否有拖尾现象。
1.5PRL内含子2引物扩增检测根据NCBI发表的鹅PRL基因,利用Primier5.0设计PRL内含子两引物。PCR引物序列如下:
2结果与分析
2.1基因组DNA的纯度、浓度测定结果若获得的DNA样品纯度低于1.7,表明蛋白质被污染,可再次进行氯仿-异戊醇抽提除去蛋白质污染。本试验测得两个品种鹅DNA纯度A260/A280比值均在1.78±0.16左右,接近纯DNA比值1.8。DNA浓度为1.32±0.37mg/mL,可见20μL血样即可获得较高浓度。
2.2琼脂糖电泳检测结果琼脂糖电泳检测DNA带型整齐、集中、无拖尾现象(见图1),说明该方法所提取的基因组DNA完整、无降解。由图可见鹅血液基因组DNA分子量大于15000bp。
图1合浦鹅、狮头鹅血液样品提取基因组DNA结果
M:DNAMarkerDL15,000;泳道1、2为合浦鹅血液提取DNA样品;泳道3、4为狮头鹅血液提取DNA样品
2.3PCR扩增结果一种基因组提取方法的好坏,最有效的评定方法是看其产物是否会影响后续的研究。由图2可以看出,PRL基因内含子2片段扩增结果整齐、清晰且无杂带,与预期片段相符。该方法所提取的基因组DNA可作为PCR扩增的模板,用于进一步序列分析。
鹅血液基因组DNA的简单快速提取方法研究—吴慧英,等
试验研究·31·
DNA的提否则会影响所提DNA样品的质量。另外,
取量还取决于细胞的裂解程度,本方法采用提取
20001000750500250100
液破碎细胞,使基因组DNA充分释放,有效地提高DNA获得量。
本方法最大的特点就是不用蛋白酶K消化蛋白,而是用DNA提取液的盐成分裂解细胞,用SDS、氯仿-异戊醇等蛋白质变性剂有效的去除蛋白。盐(如Tris、EDTA、NaCl等)的作用,除了提供一个合适的裂解环境外,还可抑制样品中的核酸酶在裂解过程中对核酸的破坏,维持核酸结构的稳定。应用此方法提取的鹅血液基因组DNA,经PCR扩增检测,均获得了目的条带,节约了大量成本。
笔者在进行氯仿:异戊醇(24:1)抽提之前增加了一次离心去沉淀的步骤,同时用低浓度的NaAc沉淀DNA,以促进DNA与多糖和其它次生代谢产物的分离,从而使最后获得的DNA纯净度较高。应用此方法提取的鹅血液基因组DNA,能够用于分子生物学实验研究、分子克隆、遗传多态性分析等,而且整个过程快速、简单,费用低廉,方便了常规实验室操作,特别是血液样本数量较大时更为实用。该方法也可以为其它禽(鸟)类的血液基因组DNA的提取提供参考。
参考文献:
[1]刘文,柯辉鹏,梁红.动植物总核酸提取试验[J].仲恺农业技
术学院学报,2008,21(3):17-21.
[2]栾德琴,杨海明.地方禽类遗传资源的现状及保护[J].家禽
图2合浦鹅、狮头鹅血液样品DNA经PCR扩增电泳结果
M:DNAMarkerDL2000;泳道1、泳道2分别为合浦鹅、狮NA经PCR扩增后PRL基因内含子2条带头鹅血液样品提取D
2.4ISSR标记多态性分析以提取的DNA为模
板进行PCR扩增,产物通过变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,结果各样品均能获得清晰稳定的条带(图3、图4),且多态性丰富,说明鹅个体之间存在遗传差异,研究价值较大。该方法提取的鹅基因组DNA能够满足PCR反应和后续分析的需要。
图3合浦鹅DNA样品ISSR多态性分析电泳图
科学,2006,7(1):3-5.
[3]SambrookJ,FritschEF,ManiatisT.分子克隆实验指南
[M].第三版.黄培堂译.北京:科学出版社,2002.461-469.[4]张细权,吕雪梅,杨玉华,等.用微卫星多态性和RAPD分析广
东地方鸡种的群体遗传变异[J].遗传学报,1998,25(2):112-119.
[5]童大跃,伍新尧,陆惠玲,等.DNA提取方法的比较及改良[J].
中山大学学报(医学科学版),2003,24(4):411-412.[6]CaoH,PaulPH,ShawPC.MethodologicalStudieson
GenomicDNAExtractionandPurificationfromPlantDrugMaterials[J].JournalofChinesePharmaceuticalSciences,1999,7(3):130.
[7]柯柳玉,谢燕燕,肖天放,等.禽类全血DNA不同提取方法的
比较[J].福建畜牧兽医,2008,30(2):4-6.
[8]GustincichSG,ManfiolettiG,DelsalD,etal.Afast
methodforhighqualitygenomicDNAextractionfromwholehumanblood[J].BioTechniques,1991,11(2):298.[9]汪永庆,王新国,徐来祥,等.一种动物基因组DNA提取方法
的改进[J].动物学杂志,2001,36(1):27-29.
图4狮头鹅DNA样品PCR扩增后ISSR分析电泳图
3讨论
提取某样品核酸之前,首先要清楚地了解该
样品特性,包括其核酸含量、酶含量、特殊杂质含量等信息。哺乳类动物的红细胞是中心部凹陷的圆板状,循环血中的红细胞(除骆驼和羊驼之外)细胞核退化、消失;而家禽红细胞多数呈椭圆形,
所以用全血即是完整的真核细胞,中心有细胞核。
可直接提取基因组DNA,且所需血样量不宜过多,
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